Цельная консервированная донорская кровь
Цельная консервированная донорская кровь - венозная кровь, заготовленная на утвержденных консервирующих растворах от здоровых доноров крови. В литературе нередко обозначается как «цельная кровь», «донорская кровь», «кровь консервированная донорская» и пр. Цельная консервированная донорская кровь представляет собой неоднородную полидисперсную жидкость с взвешенными форменными элементами. Одна единица консервированной крови, как правило, содержит 63 мл консерванта и около 450 мл донорской крови. Общий объем 513 мл. Плотность крови 1,056-1,064 -у мужчин и 1,051-1,060 -у женщин. Гематокрит цельной консервированной крови должен составлять 36-44 %.
Лица, пожелавшие сдать кровь, - доноры обязательно регистрируются, подвергаются медицинскому и лабораторному обследованию строго в соответствии с требованиями. Заготовленная кровь и ее компоненты этикетируются, документируются и подвергаются контролю качества.
Для забора крови и переработки ее на компоненты используются исключительно одноразовые стерильные системы, что позволяет полностью исключить заражение донора гепатитом, СПИДом, сифилисом или другими гемотрансмиссивными инфекциями.
Забор крови производится в специальную закрытую стерильную систему, состоящую из пластиковых контейнеров, содержащих специальные растворы для консервации крови, соединенных между собой пластиковыми трубками.
В реальном масштабе времени консервированная кровь в течение 24 ч с момента ее забора практически недоступна. Этот период времени необходим для соответствующей сертификации и маркирования, что включает в себя комплекс лабораторных методов исследования, направленных на обеспечение максимальной трансфузиологической безопасности пациента от гемотрансмиссивных инфекций и иммунологических осложнений.
Важно знать, что ни один из известных гемоконсервантов не позволяет сохранять полноценно все свойства крови. Страдает кислородно – транспортная функция эритроцитов. После переливания консервированной крови длительных сроков хранения (10 суток и более) эта функция эритроцитов in vivo восстанавливается через 16-18 ч. В консервированной крови к последнему дню хранения остаются жизнеспособными 70-80 % эритроцитов.
Активность факторов свертывания уменьшается по мере увеличения сроков хранения, и через 6-7 ч хранения активность факторов V и VII практически сведена к нулю. В связи с этим цельная консервированная кровь должна быть переработана на компоненты в течение 6 ч с момента забора крови.
В процессе стабилизации и хранения донорской крови накапливаются высвобождающийся при разрушении клеток свободный гемоглобин и калий; нарастает уровень аммиака и молочной кислоты; снижается рН крови; эритроциты изменяют свою форму, частично теряют свой электрокинетический потенциал, что способствует образованию микроагрегатов. В результате совокупных изменений до 25 % клеточных элементов консервированной крови после переливания депонируются и секвестируются в микроциркуляторном русле, что делает ее использование при острой кровопотере и анемии нецелесообразным.
Таким образом, наличие продуктов распада лейкоцитов и тромбоцитов, микро- и макроагрегатов в консервированной донорской крови в процессе хранения и особенности ее заместительного действия делают переливание цельной крови нецелесообразным, а переработку ее на компоненты крайне актуальной. Переливание донорской крови оправдано лишь при массивной кровопотере (в объеме более 30 – 40%% ОЦК), заменной гемотрансфуии при отсутствии необходимых компонентов и препаратов крови.
Компоненты крови
ЭРИТРОЦИТАРНАЯ МАССА
Эритроцитная масса – устаревший компонент крови, который получается из цельной консервированной крови, путем центрифугирования и дальнейшего удаления плазмы, а также лейкоцитов и тромбоцитов.
В состав эритроцитной массы входят непосредственно эритроциты, а именно 70-80 процентов от общей массы, плазма, которая составляет 20-30% и примесь лейкоцитов и тромбоцитов. Гематокрит эритроцитной массы напрямую зависит от первоначальных гематологических данных донора, и составляет в среднем 65-80%. Помимо этого на гематокрит влияют такие параметры, как консервирующий раствор и метод получения эритроцитной массы.
С целью улучшения реологических свойств эритроцитной массы непосредственно перед трансфузией в контейнер с кровью добавляют 50-100 мл 0,9 %-ного раствора хлорида натрия.
В основном эритроцитная масса используется при терапии анемических состояний. С целью правильного хранения эритроцитную массу рекомендуется хранить при температуре от + 4 до + 6 градусов по Цельсию. Срок хранения эритроцитной массы, законсервированной на CPD, составляет двадцать один день, а на консерванте CPDA-I - тридцать пять дней.
Эритроцитная масса не применяется в случае, если кровопотери больного составляют от 10 до 15%, а также уровень гематокрита, гемоглобина находится в норме. С целью возместить кровопотери и для поддержания стабильной гемодинамики таким пациентам необходимо ввести кровезаменители. Эритроцитную массу не применяют при остром септическом эндокардите, прогрессирующем развитии диффузного гломерулонефрита, хронической почечной, хронической и острой печеночной недостаточности, декомпенсации кровообращения, пороках сердца в стадии декомпенсации, остром ревматизме, гипертонической болезни Зет.
ЭРИТРОЦИТНОЙ ВЗВЕСИ
ЭРИТРОЦИТНОЙ ВЗВЕСИ - компонента донорской крови, из которого удалена плазма, а эритроциты содержатся в специальном питательном растворе SAGM (содержит хлорид натрия, аденин, глюкозу и маннитол, растворенные в воде). Гематокрит эритроцитной взвеси не превышает 70%, что обеспечивает сохранность эритроцитов и хорошие реологические свойства компонента. Эритроцитную взвесь переливают без предварительного разведения физиологическим раствором. Уникальный биохимический состав взвешивающего раствора обеспечивает сохранность функциональных свойств эритроцитов. Срок хранения эритроцитной взвеси - 42 суток.
Преимущество эр. взвеси перед эр. массой:
Гематокрит ≤ 0,70 (сохранность эритроцитов, реология)
Не надо разводить
Сохранность до 42 суток (PAGGS - до 56 суток)
Нет плазмы. Нет аллергии, ТРАЛИ
Максимальный выход плазмы
В плазме нет аденина
Показания к применению эритроцитной взвеси:
1.Острые постгеморрагические анемии (травмы, сопровождающиеся кровопотерей; желудочно-кишечные кровотечения, кровопотери при хирургических операциях, родах).
2. Тяжелые формы железодефицитных анемий (особенно у пожилых лиц, при выраженных изменениях гемодинамики).
3. Анемии, сопровождающие хронические заболевания желудочно-кишечного тракта и других органов и систем, интоксикации при ожогах, отравлениях, гнойной инфекции и др.
4. Анемии, сопровождающие депрессию эритропоэза (острые и хронические лейкозы, апластический синдром, миеломная болезнь, почечная недостаточность).
5. При подготовке больных с анемией к хирургическим вмешательствам, когда предполагается большая кровопотеря.
Противопоказания к применению эритроцитной взвеси:
1. Гипокоагуляционные состояния.
2. Тромбоэмболии различного генеза.
3. Приобретенная негемолитическая анемия.
Эритроцитная масса с удаленным лейкотромбослоем.
При приготовлении этого гемокомпонента после центрифугирования удаляется плазма и от 20 до 60 мл поверхностного слоя клеток. Некоторое количество плазмы возвращается, чтобы достичь величины гематокрита 0,65 – 0,75.
Эти трансфузионные среды необходимы при проведении заместительной терапии у много рожавших женщин, у лиц с отягощенным трансфузионным анамнезом. Использование эритроцитной массы, обедненной лейкоцитами и тромбоцитами снижает риск передачи вирусных инфекций (вируса иммунодефицита человека, цитомегаловируса). Существующие в настоящее время специальные лейкоцитарные фильтры позволяют эффективно удалять из эритроцитной массы белки плазмы, микроагрегаты, тромбоциты и лейкоциты (эритроцитная масса фильтрованная)
Отмытые эритроциты
Отмытые эритроциты – компонент крови, полученный из цельной крови центрифугированием и удалением плазмы с последующим отмыванием эритроцитов изотоническим раствором.
Отмытые эритроциты – взвесь эритроцитов, из которой в основном удалены плазма, лейкоциты и тромбоциты. Гематокрит – от 65% до 75%. В каждой дозе по окончании переработки должно содержаться не менее 40 г гемоглобина.
Отмытые эритроциты показаны для замещения эритроцитов у пациентов с антителами к белкам плазмы, а также у пациентов с тяжелыми посттрансфузионными аллергическими реакциями, у пациентов с печеночной и почечной недостаточностью.
Владельцы патента RU 2495568:
Изобретение относится к медицине. Проводят получение донорской крови, смешивание с гемоконсервантом глюцир в соотношении 4:1, разделение донорской крови на плазму и эритроцитную массу с последующим хранением эритроцитной массы в течение 30 суток при t=+4°С. Дополнительно в состав гемоконсерванта вводят 3-окси-6-метил-2-этилпиридина малат. Изобретение позволяет повысить эффективность защиты клеточных мембран эритроцитов, ограничить процесс гемолиза, предупредить образование микросгустков на поздних сроках хранения эритроцитарной массы. 1 з.п. ф-лы, 6 табл., 5 пр.
Изобретение относится к медицине, а именно, к фармакологии и трансфузиологии, и может быть использовано для консервирования эритроцитарной массы и хранения донорских эритроцитов до 30 суток при t=+4°С.
Консервирование донорской крови и эритроцитарной массы проводится с использованием гемоконсервантов и дополнительных веществ, способствующих укреплению клеточной мембраны эритроцитов, в качестве которых используются вещества, уплотняющие мембрану и частично обезвоживающие ее (сахароза, маннит, сорбит), а также коллоидные препараты (растворы желатина, поливинилпирролидона), которые, обволакивая эритроцитную мембрану, повышают ее стабильность при консервировании (Шевченко Ю.Л., Шабалин В.Н., Заривчатский М.Ф., Селиванов Е.А. «Руководство по общей и клинической трансфузиологии.» - Спб: ООО «Фолиант», 2003, с.127-128.).
Недостатком существующего способа является значительное снижение эффективности: отсутствие влияния на процессы перекисного окисления липидов и образование свободных радикалов при хранении донорских эритроцитов, что неизбежно приводит к ускоренному старению клеток.
Также известен способ консервирования донорской крови путем дополнительного введения 3-окси-6-метил-2-этилпиридина сукцината (мексидола, далее ОПС) в состав стандартного гемокон-серванта глюгицир в концентрации 0,25 мг/мл глюгицира. При этом консервант содержит в 1 литре воды натрия гидроцитрат двузаме-щенный 20 г, глюкозы безводной 30 г, а также дополнительно ОПС 0,25 г. Соотношение крови и консерванта 4:1 (Патент РФ №2410103).
Недостатком данного способа, несмотря на успешную коррекцию процессов перекисного окисления липидов в донорской крови и повышение ее качества по сравнению с кровью, консервированной только с использованием глюгицира, является снижение защитной активности заявленной комбинации глюгицира ОПС к 14-ым, 21-ым и 30-ым суткам хранения донорской крови.
Целью изобретения является более эффективная защита клеточных мембран эритроцитов, в большей степени ограничение процессов гемолиза и предупреждение образование микросгустков на поздних сроках хранения эритроцитарной массы (14-21-30 сутки).
Поставленная цель решается дополнительным введением 3-окси-6-метил-2-этилпиридина малата (этоксидола, далее ОПМ) в состав гемоконсерванта глюгицир в концентрации 0,25 мг/мл глюгицира. Консервант содержит в 1 литре воды натрия гидроцитрат двузамещенный 20 г, глюкозы безводной 30 г, ОПМ 25 г. Соотношение крови и консерванта 4:1.
Технический результат заключается в повышении качества эритроцитарной массы при ее хранении до 14-21-30 суток. Консервант позволяет сохранить морфофункциональную полноценность эритроцитов в течение 30 суток.
Изобретение иллюстрируются следующими примерами.
Исследование влияния ОПМ проводилось в образцах эритро-цитной массы, заготовленной на гемоконсерванте глюгицир, который содержал 0,25 мг/мл, 0,5 мг/мл и 1,0 мг/мл ОПМ.
Контролем служила эритроцитарная масса, заготовленная на глюгицире без добавок.
Серией сравнения явились образцы донорской эритроцитарной массы, заготовленной на гемоконсерванте глюгицир, который содержал 0,25 мг/мл, 0,5 мг/мл и 1,0 мг/мл ОПС.
Исследования ряда показателей, отражающих качество эритроцитов, проводили в образцах эритроцитарной массы сразу после заготовки, затем, в процессе хранения при t=+4°С через 7 суток, 14 суток, 21 сутки и 30 суток.
Влияние ОПМ на морфо-функциональную полноценность донорских эритроцитов исследовали путем определения содержания свободного гемоглобина бензидиновым методом, доли осмотически неустойчивых эритроцитов (по содержанию свободного гемоглобина после помещения эритроцитов в 0,6% раствор натрия хлорида), количества микросгустков (подсчет под микроскопом), определяли процент гемолиза, среднего объема эритроцита (MCV) и ширины распределения эритроцитов (анизоцитоз) на гематологическом анализаторе МЕК-6410К (Япония).
Хранение донорской эритроцитной массы сопровождается увеличением проницаемости клеточной мембраны, ростом осмотической неустойчивости эритроцитов и увеличением содержания свободного гемоглобина, нарастанием количества микросгустков.
На сроках хранения свыше 7 суток в образцах эритроцитарной массы с добавлением ОПМ наблюдалось достоверно более значительное снижение количества микросгустков во всех изученных дозах (0,25 мг/мл, 0,5 и 1,0 мг/мл глюгицира), чем при добавлении к глюгициру ОПС. Так, при использовании препарата в концентрации 0,25 мг/мл показатель снижался относительно данных контроля на 14-е сутки 48%, на 21-е сутки - 47% и на 30-е сутки хранения - на 50% и был меньше серии сравнения, соответственно, на 41%, 31% и 34%.
При использовании для добавления к глюгициру ОПМ в концентрации 0,5 мг/мл количество микросгустков в образцах эритроцитарной массы снижалось по сравнению с контролем к 14-м суткам на 41%, к 21-м - на 47% и к 30-м - на 52%, в том числе, по сравнению с показателями серии сравнения (с применением ОПС в соответствующей концентрации), на 33%, 30% и 46%, соответственно.
ОПМ в концентрации 1,0 мг/мл позволило ограничить рост количества микросгустков на 14-е, 21-е и 30-е сутки хранения на 41%, 34% и 47%, соответственно, по сравнению с контрольными данными. Кроме того, показатель был ниже серии сравнения на 34%, 14% и 41%.
| Таблица 1. | |||||
| Влияние ОПС и ОПМ на количество микросгустков (в 10 6 л) при хранении эритроцитной массы (n=20). | |||||
| Метод коррекции | |||||
| исход | 7 сут. | 14 сут. | 21 сут. | 30 сут. | |
| (контроль) | 4,500±0,224 | 47,30±1,14 | 145,45±1,60 | 198,8±6,35 | |
| 3-ОПС | 1,01±0,04∗ | 41,9±0,73∗ | 111,4±1,48∗ | 151,7±1,73∗ | |
| 0,25 мг/мл | |||||
| 3-ОТП | 2,587±0,112∗# | 24,73±0,712∗# | 77,39±1,95∗# | 100,13±1,46∗# | |
| 0,25 мг/мл | |||||
| 3-ОПС | 0,000±0,001 | 0,91±0,04∗ | 41,7±0,42∗ | 110,6±1,26∗ | 176,7±2,25∗ |
| 0,5 мг/мл | |||||
| 3-ОПМ | 2,787±0,107∗# | 27,933±0,530∗# | 77,200±1,797∗# | 94,75±1,98∗# | |
| 0,5 мг/мл | |||||
| 3-ОПС | 0,90±0,05∗ | 42,2±0,62∗ | 111,5±1,72∗ | 177,7±2,07∗ | |
| 1,0 мг/л | |||||
| 3-ОПМ | 2,693±0,111∗# | 27,800±0,500∗# | 96,41±2,13∗# | 105,59±0,89∗# | |
| 1,0 мг/мл | |||||
| <0,05 по сравнению с данными контроля соответствующего срока наблюдения; # - по сравнению с данными при введении ОПС соответствующей концентрации и срока наблюдения. |
Минимальное содержание микросгустков определялось в образцах с добавлением ОПМ в концентрации 0,5 мг/мл. Динамические изменения гематологических показателей эритроцитов, свидетельствуют о целесообразности применения ОПМ при консервировании эритроцитарной массы (табл.1).
Уровень свободного гемоглобина на 7-е сутки хранения донорской эритроцитарной массы на фоне добавления к консерванту ОПМ в концентрации 0,25 мг/мл, 0,5 мг/мл и 1,0 мг/мл был ниже контрольных данных на 24%, 33% и 22%, соответственно, и достоверно не отличался от показателей группы сравнения с добавлением ОПС (табл.2).
К 14 суткам хранения эритроцитарной массы в образцах с добавлением к консерванту ОПМ уровень свободного гемоглобина был меньше контрольных данных на 20%, 42% и 27%. При этом в группе сравнения, где к консерванту глюгицир добавлялся ОПС в соответствующих дозах, достоверного снижения содержания свободного гемоглобина не наблюдалось (табл.2).
На 21 сутки хранения эритроцитарной массы с добавлением к консерванту глюгицир ОПМ уровень свободного гемоглобина был ниже показателей контроля на 58%, 69% и 61%, в то время как в серии сравнения с добавлением ОПС показатель снижался относительно контроля только при использовании концентрации 0,25 мг/мл на 34% (табл.2).
К 30-м суткам хранения донорской эритроцитарной массы наибольшее снижение уровня свободного гемоглобина наблюдалось при использовании концентрации ОПМ 0,5 мг/мл.
| Таблица 2. | |||||
| Влияние ОПМ на уровень свободного гемоглобина (г/л) при хранении эритроцитарной массы (М±m). | |||||
| Метод коррекции | |||||
| исход | 7 сут. | 14 сут. | 21 сут. | 30 сут. | |
| (контроль) | 0,051±0,001 | 0,079±0,007 | 0,206±0,008 | 0,583±0,018 | |
| 3-ОПС | 0,039+0,001∗ | 0,069±0,001 | 0,135±0,015∗ | 0,219±0,010∗ | |
| 0,25 мг/мл | |||||
| 3-ОПМ | 0,03910,001∗ | 0,063+0,003∗ | 0,086+0,002∗# | 0,301±0,007∗# | |
| 0,25 мг/мл | |||||
| 3-ОПС | 0,029+0,001 | 0,039+0,001∗ | 0,069±0,001 | 0,239±0,010 | 0,284+0,010∗ |
| 0,5 мг/мл | |||||
| 3-ОПМ | 0,034±0,002∗ | О,046±0,002∗# | 0,064±0,003∗# | 0,274±0,031∗ | |
| 0,5 мг/мл | |||||
| 3-ОПС | 0,039+0,001∗ | 0,069±0,001 | 0,239±0,010 | 0,284±0,010∗ | |
| 1,0 мг/л | |||||
| 3-ОПМ | 0,040±0,001∗ | Э,058±0,001∗# | 0,080+0,003∗# | 0,380±0,015∗# | |
| 1,0 мг/мл | |||||
| Примечание: ∗ - достоверность различий р<0,05 по сравнению с данными контроля соответствующего срока наблюдения; # - по сравнению с данными при введении ОПС соответствующей концентрации и срока наблюдения. |
Процент гемолиза в образцах донорской эритроцитарной массы снижался при добавлении ОПМ к консерванту глюгицир к 7 суткам хранения по сравнению с контролем на 52%, 69% и 70%, соответственно, при использовании концентрации ОПМ 0,25 мг/мл, 0,5 мг/мл и 1,0 мг/мл. При этом показатель во всех исследованных концентрациях снижался достоверно в большей степени, чем при добавлении к глюгициру ОПС.
На 14 сутки хранения процент гемолиза также был ниже контроля на 64%, 69% и 63% при использовании концентрации ОПМ 0,25 мг/мл, 0,5 мг/мл и 1,0 мг/мл, соответственно, и был достоверно меньше данных серии сравнения, где добавлялся ОПС, на 59%, 65% и 61%.
На 21 сутки хранения эритроцитарной массы процент гемолиза был ниже контрольных данных на 49% и 22% в образцах с использованием концентрации ОПМ 0,5 и 1,0 мг/мл. При этом более выраженное снижение процента гемолиза по сравнению с добавлением в консервант ОПС наблюдалось при использовании концентрации ОПМ 0,5 мг/мл (на 56%).
На 30-е сутки хранения эритроцитарной массы процент гемолиза был ниже контрольных данных на 46%, 58% и 48% в образцах с добавлением к консерванту ОПМ в концентрации 0,25 мг/мл, 0,5 мг/мл и 1,0 мг/мл. Причем, при использовании концентрации 0,5 мг/мл показатель был ниже данных группы сравнения на 19%.
Таким образом, процент гемолиза снижался в большей степени при различных сроках хранения эритроцитарной массы в образцах, где к консерванту глюгицир добавлялся ОПМ в концентрации 0,5 мг/мл.
| Таблица 3. | |||||
| Влияние ОПС и ОПМ на % гемолиза при хранении эритроцитарной массы (М±m). | |||||
| Метод коррекции | Сроки хранения эритроцитной массы, сут. | ||||
| Исход | 7 сут. | 14 сут. | 21 сут. | 30 сут. | |
| (контроль) | 0,113±0,003 | 0,175±0,015 | 0,458±0,017 | 1,456±0,044 | |
| 3-ОПС | 0,085±0,002∗ | 0,153+0,003 | 0,29910,034∗ | 0,54510,024∗ | |
| 0,25 мг/мл | |||||
| 3-ОПМ | 0,054±0,006∗# | 0,063±0,003∗# | 0,398±0,071 | 0,793±0,021∗# | |
| 0,25 мг/мл | |||||
| 3-ОПС | 0,058±0,002 | 0,089±0,004∗ | 0,157±0,004 | 0,53010,021 | 0,75010,038 ∗ |
| 0,5 мг/мл | |||||
| 3-ОПМ | 0,035±0,002∗# | 0,055±0,006∗# | 0,235±0,013∗# | 0,61±0,06∗# | |
| 0,5 мг/мл | |||||
| 3-ОПС | 0,08710,002∗ | 0,166±0,008 | 0,51410,025 | 0,71110,025∗ | |
| 1,0 мг/л | |||||
| 3-ОПМ | 0,034±0,002∗# | 0,065±0,004∗# | 0,357±0,064# | 0,756±0,033∗ | |
| 1,0 мг/мл | |||||
| Примечание: ∗ - достоверность различий р<0,05 по сравнению с данными контроля соответствующего срока наблюдения; # - по сравнению с данными при введении ОПС соответствующей концентрации и срока наблюдения. |
Доля осмотически неустойчивых эритроцитов снижалась по сравнению с контролем на всех сроках наблюдения при добавлении к консерванту глюгицир ОПМ в изученных концентрациях (табл.4). При этом при добавлении ОПМ в концентрации 0,5 мг/мл показатель не отличался от данных серии сравнения, а в концентрации 1,0 мг/мл был ниже, чем при добавлении ОПС на 32%, 7% и 17% на сроках хранения 14, 21 и 30 суток.
| Таблица 4. | |||||
| Влияние ОПМ на долю осмотически неустойчивых эритроцитов (%) при хранении эритроцитной массы (n=20). | |||||
| Метод коррекции | Сроки хранения эритроцитной массы. | ||||
| исход | 7 сут. | 14 сут. | 21 сут. | 30 сут. | |
| (контроль) | 7,45±0,11 | 12,24+0,12 | 16,97+0,09 | 22,905+0,36 | |
| 3-ОПС | 3,54±0,08∗ | 5,09+0,07* | 11,33±0,16∗ | 13,84±0,15∗ | |
| 0,25 мг/мл | |||||
| 3-ОПМ | 3,93±0,07∗ | 7,35±0,13∗# | 12,28+0,18∗# | 14,11+0,10∗ | |
| 0,25 мг/мл | |||||
| 3-ОПС | 0,03 7±0,003 | 3,50±0,07∗ | 4,98±0,08∗ | 11,32±0,14∗ | 13,57±0,11∗ |
| 0,5 мг/мл | |||||
| 3-ОПМ | 3,47+0,11∗ | 4,93+0,11∗ | 11,43+0,20∗ | 13,67+0,16∗ | |
| 0,5 мг/мл | |||||
| 3-ОПС | 3,94±0,06∗ | 7,45±0,08∗ | 12,24+0,13∗ | 16,99+0,11∗ | |
| 1,0 мг/л | |||||
| 3-ОПМ | 3,60+0,11∗ | 5,07±0,07∗# | 11,43±0,20∗# | 14,03+0,21∗# | |
| 1,0 мг/мл | |||||
| Примечание: ∗ - достоверность различий р<0,05 по сравнению с данными контроля соответствующего срока наблюдения; # - по сравнению с данными при введении ОПС соответствующей концентрации и срока наблюдения. |
На всех сроках хранения эритроцитарной массы при добавлении к консерванту глюгицир ОПМ в изученных концентрациях наблюдается уменьшение процессов анизоцитоза (табл.5) и ограничение роста объема эритроцитов (табл.6). При этом предотвращается увеличение ширины распределения размеров эритроцитов и их объема свыше нормы при хранении образцов донорской эритроцитарной массы до 30 суток, в то время как в контроле в 80% случаев на поздних сроках хранения наблюдается увеличение размеров эритроцитов.
| Таблица 5. | ||||||||
| Влияние ОПС и ОПМ на анизоцитоз (ширина распределения эритроцитов) (%CV) при хранении эритроцитарной массы (М±m). | ||||||||
| Метод коррекции | Сроки хранения эритроцитной массы, сут. | |||||||
| исход | 7 сут. | 14 сут. | % | 21 сут. | % | 30 сут. | % | |
| (контроль) | 14,23±0,17 | 15,66±0,06 | 0 | 16,22±0,05 | 10 | 17,02+0,1 0 | 80 | |
| 3-ОПМ 0,25 мг/мл | 12,68+0,12∗ | 13,65±0,27∗ | 0 | 13,72+0,29∗ | 0 | 14,52±0,31∗ | 0 | |
| 3-ОПМ 0,5 мг/мл | 10,90 ±0,16 | 12,28+0,24∗ | 13,65+0,27∗ | 0 | 13,72+0,29∗ | 0 | 14,52±0,31∗ | 0 |
| 3-ОПМ 1,0 мг/мл | 13,06±0,34∗ | 14,27+0,19∗ | 0 | 14,25±0,61∗ | 0 | 14,73±0,61∗ | 0 | |
| Примечание: ∗ - достоверность различий р<0,05 по сравнению с данными контроля соответствующего срока наблюдения; % - процент эритроцитов, размеры которых превышают норму контроль - 21 сутки, контроль - 30 сутки. При добавлении ОПМ - 21 сутки. При добавлении ОПМ - 30 сутки. |
| Таблица 6. | ||||||||
| Влияние ОПС и ОПМ на средний объем эритроцитов (fl) при хранении эритроцитарной массы (М±m). | ||||||||
| Метод коррекции | Сроки хранения эритроцитной массы, сут. | |||||||
| Исход | 7 сут. | 14 сут. | % | 21 сут. | % | 30 сут. | % | |
| - (контроль) | 91,28±0,45 | 91,68±0,46 | 0 | 97,45+0,66 | 15 | 99,86+0,39 | 55 | |
| 3-ОПМ | 90,55±0,33 | 94,57±0,40 | 0 | 92,76±0,38∗ | 0 | 97,24+0,52∗ | 0 | |
| 0,25 мг/мл | ||||||||
| 3-ОПМ | 87,38±0,62 | 91,53±0,70 | 91,29±0,27 | 0 | 96,00±0,41 | 0 | 97,19±0,38∗ | 0 |
| 0,5 мг/мл | ||||||||
| 3-ОПМ | 91,66+0,67 | 94,57±0,38 | 0 | 95,71±0,33∗ | 0 | 96,88±0,66∗ | 0 | |
| 1,0 мг/мл | ||||||||
| Примечание: ∗ - достоверность различий р<0,05 по сравнению с данными контроля соответствующего срока наблюдения; % -процент эритроцитов, содержание гемоглобина в которых не соответствует норме (норма - 80-l00fl). |
Дополнительное применение 3-окси-6-метил-2-этилпиридина малата в составе гемоконсерванта «глюгицир» позволяет пролонгировать сроки хранения донорских эритроцитов и снизить уровень деструктивных процессов в хранящейся до востребования эритроцитной массе.
1. Способ консервирования донорской эритроцитарной массы, включающий получение донорской крови, смешивание с гемоконсервантом в соотношении 4:1, разделение донорской крови на плазму и эритроцитную массу, с последующим хранением эритроцитной массы в течение 30 суток при t=+4°С, отличающийся тем, что дополнительно в состав гемоконсерванта глюгицир вводят 3-окси-6-метил-2-этилпиридина малат.
2. Способ по п.1, отличающийся тем, что 3-окси-6-метил-2-этилпиридина малат вводят в концентрации 0,5 или 1,0 мг/мл глюгицира.
Похожие патенты:
Изобретение относится к области медицины, а именно к способу получения минерализованного костного матрикса. Способ получения минерализованного костного матрикса, включающий механическую очистку губчатой кости от хрящевой ткани, перфорацию кости спицей, далее кость последовательно обрабатывают раствором натрия хлорида и твина-100, раствором перекиси водорода, смесью хлороформ-этанол, перемешивают, объем всех используемых растворов составляет не менее 5 объемов губчатой кости, далее обрабатывают спирт-эфирной смесью, перемешивают, все перемешивания проводят на магнитной мешалке, далее центрифугируют и проветривают на воздухе, затем костные фрагменты замораживают, лиофильно высушивают и стерилизуют, при определенных условиях.
Изобретение относится к области медицины, а именно инфектологии и патологической анатомии, и может быть использовано для диагностики телэнцефального глиоза (ТГ) у детей с врожденными инфекциями.
Изобретение относится к области криобиологии, клеточной биологии, морской биотехнологии и гидробиологии. Проводят обработку клеток морских микроводорослей криопротекторной смесью, содержащей проникающий и непроникающий криопротекторы и питательную среду. Осуществляют замораживание с последующим сохранением в жидком азоте. В качестве питательной среды берут стерильную морскую воду при следующем соотношении компонентов, в масс.%: проникающий криопротектор 5-7,5%; непроникающий криопротектор 1,5-3%; стерильная морская вода - остальное. Перед замораживанием проводят инкубацию клеток морских микроводорослей на ледяной бане в течение не менее 10 минут. Замораживание ведут в три этапа: сначала охлаждают до -25°C со скоростью 0,9-1,1°C/мин; затем охлаждают до -75°C со скоростью 2-2,5°C/мин; после чего охлаждают до -196°C, помещая клетки морских микроводорослей в жидкий азот. В качестве проникающего криопротектора можно использовать диметилсульфоксид (ДМСО) или этиленгликоль. В качестве непроникающего криопротектора - трегалозу или поливинилпирролидон (ПВП). Изобретение позволяет повысить выход жизнеспособных, функционально активных клеток микроводорослей после замораживания-оттаивания и восстановить их культуру в течение недели после криоконсервации, обеспечивая при этом возможность количественной оценки функционального состояния микроводорослей. 2 з.п. ф-лы, 1 ил., 3 табл., 5 пр.
Изобретение относится к офтальмологии. Раствор для хранения роговицы содержит смесь биологических сред M199 и DMEM, хондроитина сульфат, L-аланил-L-глутамин, 4-(2-гидроксиэтил)-1-пиперазинэтансульфоновую кислоту (HEPES), пируват натрия, β-гидроксибутират натрия, гентамицина сульфат, амфотерицин В, 2,3,5,7,8-пентагидрокси-6-этилнафталиндион-1,4 (эхинохром А) и гидроксиэтилкрахмал при следующем соотношении компонентов, мас.%: среда M199 0,64; среда DMEM 0,447; гидроксиэтилкрахмал 5-10; хондроитина сульфат 2,5; эхинохром А 0,001-0,01; L-аланил-L-глутамин 0,05425; буфер HEPES 0,5958; пируват натрия 0,0055; β-гидроксибутират натрия 0,151; гентамицина сульфат 0,01; амфотерицин В 0,0000250; дистиллированная вода до 100. Изобретение позволяет увеличить срок хранения роговицы. 1 ил., 1 табл., 1 пр.
Изобретение относится к медицине, ветеринарии и биологии. Проводят фиксацию образца, декальцинацию, промывание водой, дегидратацию в спиртовых растворах и заливку в парафин. Фиксацию образца проводят в течение 24-х часов в молекулярном фиксаторе FineFix на спиртовой основе, содержащем FineFix и 96° спирт в соотношении 1:2,5. Декальцинацию осуществляют в течение 2-5 суток в 5-8% забуференном растворе муравьиной кислоты при ежедневной смене декальцинирующего раствора и контроле полноты декальцинации. Соотношение образец: декальцинирующий раствор составляет 1:20. После завершения декальцинации проводят промывку образца водой и до стадии дегидратации повторно помещают образец в спиртовой раствор молекулярного фиксатора FineFix на 6-12 часов. Набор для приготовления препарата костной ткани содержит молекулярный фиксатор FineFix на спиртовой основе, концентрированный раствор декальцинатора, изготовленный из расчета 40 г лимоннокислого натрия, 100 мл 90%-ного раствора муравьиной кислоты, 300 мл дистиллированной воды и рабочие растворы для контроля полноты декальцинации, содержащие насыщенный раствор оксалата аммония и 25%-ный водный раствор аммиака. Изобретение позволяет получать высококачественные препараты, пригодные для последующего гистологического и иммуногистологического исследования при отсутствии использования высокотоксичных компонентов. 2 н.п. ф-лы, 2 ил.
Единица дозирования в форме прессованной таблетки для замедленного высвобождения средства против насекомых содержит испаряющееся средство против насекомых и инертную твердую основу. Твердая основа содержит двухкомпонентную систему, включающую материал для придания объема и материал, обеспечивающий пористость. Материал для придания объема выбран из группы наполнителей прямого прессования. Материал, обеспечивающий пористость, является карбонатом или бикарбонатом. Устройство подачи средства против насекомых содержит емкость для средства против насекомых. Для получения единицы дозирования ингредиенты смешивают и таблетируют при температуре выше температуры плавления средства против насекомых. Дозатор средства против насекомых содержит единицу дозирования в качестве единственного источника средства против насекомых. Состав находится в форме таблетки, помещенной рядом с нагревателем. Устройство содержит вилку, которая обеспечивает электрическое соединение с нагревателем, и колпак для таблетки, содержащий кожух и крышку. 4 н. и 9 з.п. ф-лы, 2 ил., 1 пр.
Устройство для консервирования замораживанием клеточных взвесей под давлением в атмосфере инертного газа - портативный криобароконтейнер - выполнен из нержавеющей стали марки 12Х18Н10Е и состоит из передней и задней панелей. На передней панели расположено восемь отверстий для стяжных болтов, а в верхней части имеется винт с толкателем для пережатия трубки пластикового контейнера, через которую заливается клеточная взвесь и подается под давлением инертный газ в стандартный контейнер «Компопласт 300». Контейнер находится в криобароконтейнере, а на задней панели в центральной части расположена ниша, выполненная точно по объему и размерам стандартного пластикового контейнера, а в верхней части имеется канал, по которому проходит трубка от него, а в верхней и нижней частях ниши находятся возвышения. Сверху задней панели расположена петля для подвешивания всего устройства, а по всему периметру задней панели расположено восемь стяжных болтов, закрепленных винтовой нарезкой и сваркой в задней панели. С задней стороны задней панели присоединена основными восьмью стяжными болтами и монтажными винтами задняя стенка. Использование данного изобретения позволяет производить замораживание по различным программам. 2 ил.
Изобретение относится к упаковке для вмещения и хранения жидкого вещества, предназначенного для замораживания. Упаковка (1) для вмещения и хранения жидкого вещества (S), предназначенного для замораживания, содержит две герметизирующие стенки (4, 7), соединенные друг с другом для образования камеры (2) вмещения жидкого вещества (S), одно посадочное место (3), изолированное от герметизирующей камеры (2), для вмещения устройства (T) считывания температуры жидкого вещества (S). Герметизирующие стенки (4, 7) содержат две внешние стенки (4), которые образуют внешние габаритные размеры самой упаковки, опорные стенки (7), разграничивающие посадочное место (3) и выполненные с возможностью образования сквозного отверстия через герметизирующую камеру (2), которая имеет две вмещающие области (2а). Внешние стенки (4) образуют край (5), имеющий впускной зазор (6) для жидкого вещества (S). Опорные стенки имеют пару первых сторон (7а) напротив друг друга и пару вторых сторон (7b) напротив друг друга. Изобретение позволяет повысить надежность считывания температурных данных во время контроля и сертификации. 7 з.п. ф-лы, 2 ил.
Изобретение относится к медицине, а именно к онкологии, акушерству и гинекологии, и может быть использовано при необходимости сохранения и восстановления репродуктивной функции у женщин с онкологическими заболеваниями. Для этого до проведения курса лучевой и/или химиотерапии лапароскопическим доступом осуществляют забор образцов яичниковой ткани из кортикального слоя с фрагментацией их на части по 2-5 мм2. Из полученных образцов одну часть берут на гистологические исследования, а другую помещают в криопробирки и консервируют в две стадии. При этом в качестве криопротектора на первой стадии используют 10-14% раствор диметилсульфоксида, на второй стадии - 20% раствор 2,5 М сахарозы и 29-32% раствор диметилсульфоксида. При проведении аутотрансплантации образцы яичниковой ткани размораживают с использованием среды Kitazata и оценивают их качество путем гистологического исследования. Непосредственно перед трансплантацией лапароскопическим путем проводят биопсию сохраненных яичников с последующим проведением гистологического исследования. При удовлетворительном результате исследования в кортикальном слое каждого яичника формируют ложе и помещают в них от 5 до 10 фрагментированных размороженных образцов. Затем края ложа смыкают, обрабатывают биологически нейтральным клеем и накладывают клеммы для последующего визуального контроля и оценки динамики роста фолликулов трансплантированной ткани с применением визуальной диагностики. Контроль уровня гормонов проводят один раз в месяц до достижения уровня гормонов на момент забора яичниковой ткани для консервации. Способ позволяет сохранить или восстановить репродуктивную функцию у женщин с онкологическими заболеваниями за счет трансплантации декриоконсервированной овариальной ткани в сохраненные яичники, что обеспечивает адекватную васкуляризацию и приживаемость ткани. 3 з.п. ф-лы, 3 табл., 5 ил., 3 пр.
Изобретение относится к пантовому оленеводству, в частности к консервированию варочной пантовой воды непосредственно на мараловодческой ферме в период панторезной компании. Способ заключается в том, что наряду с термообработкой варочной пантовой воды в качестве консерванта используют листья бадана. Предлагаемое изобретение позволяет в период панторезной компании на мараловодческой ферме сохранять для реализации весь объем варочной пантовой воды без изменения ее органолептических характеристик. 2 з.п. ф-лы, 2 табл., 1 пр.
Изобретение относится к медицине. Биоткань перед ферментативной обработкой помещают в гипертонические растворы хлорида натрия и подвергают воздействию ультразвука в течение 20-300 минут. Затем обрабатывают ферментом террилитином в концентрации 0,1-10 ПЕ на 1 грамм ткани, отмывают в растворе уксусной кислоты и гидрокарбонате натрия, выдерживают в многократно заменяющихся растворах глутарового альдегида возрастающих концентраций и стерилизуют. Изобретение позволяет гарантированно сохранить коллагеново-эластическую структуру биоткани, снизить степень ее минерализации, сократить расход используемых для обработки реактивов, получить неиммуногенный, прошитый по всему объему, биоматериал. 1 з.п. ф-лы, 3 пр.
Изобретение относится к медицине. Проводят получение донорской крови, смешивание с гемоконсервантом глюцир в соотношении 4:1, разделение донорской крови на плазму и эритроцитную массу с последующим хранением эритроцитной массы в течение 30 суток при t+4°С. Дополнительно в состав гемоконсерванта вводят 3-окси-6-метил-2-этилпиридина малат. Изобретение позволяет повысить эффективность защиты клеточных мембран эритроцитов, ограничить процесс гемолиза, предупредить образование микросгустков на поздних сроках хранения эритроцитарной массы. 1 з.п. ф-лы, 6 табл., 5 пр.
Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже
Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.
Министерство образования Российской Федерации
Пензенский Государственный Университет
Медицинский Институт
Кафедра Хирургии
«Компоненты крови»
Выполнила: студентка V курса
Проверил: к.м.н., доцент
План
Введение
1. Эритроцитарная масса и взвесь
· Эритроцитарная масса
· Эритроцитарная взвесь
· Методика применения эритроцитарной массы и эритроцитарной взвеси
2. Лейкоцитарная масса
· Методы получения лейкоцитарной массы для трансфузий
· Хранение лейкоцитарной массы
· Методика трансфузии лейкоцитарной массы
3. Тромбоцитарная масса
· Методики получения тромбоцитарной массы
· Хранение ТМ
· Методика переливания ТМ
4. Плазма крови
Литература
Введение
Разделение цельной крови проводят путем осаждения форменных элементов, которое происходит в результате ее 24-часового хранения при +4°С или центрифугирования (1500 об./мин в течение 25 мин).
1. Эритроцитная масса и взесь
Эритроцитарная масса
Эритроцитная масса (ЭМ) представляет собой эритроциты отделенные от плазмы. По своим лечебным свойствам ЭМ равноценна эритроцитам консервированной крови. По внешнему виду ЭМ отличается от донорской крови лишь тем, что имеет меньший объем плазмы над слоем осевших клеток. Другими словами, ЭМ представляет собой концентрат эритроцитов с гематокритным числом 65-80%.
Заготовка ЭМ производится следующим образом. Сначала заготавливается донорская кровь. Затем ее центрифугируют или отстаивают. После этого пробку флакона необходимо проколоть двумя иглами (одна игла служит для стравливания воздуха из флакона, а через другую происходит эвакуация плазмы). Все манипуляции по заготовке ЭМ производятся в строго асептических условиях в боксированной операционной. ЭМ заготавливают как во флаконы, так и в пластиковые мешки.
Для паспортизации на флакон или мешок наклеивают этикетку.
ЭМ хранят в обычном холодильнике при температуре +4...+6°С не более 3 недель. Перед выдачей ЭМ из экспедиции проводится контроль ее пригодности для переливания: слой плазмы над эритроцитами должен быть прозрачным (абсолютно не допускается наличия нитей фибрина, сгустков, мути).
Эритроцитная взвесь
Эритроцитная взвесь (ЭВ) представляет собой ЭМ, ресуспендированную в растворе плазмозаменителя. Обычно в качестве ресуспендирующего раствора используется ЦОЛИПК-8. Соотношение ЭМ и раствора должно быть 1:1. Хранить ЭВ можно до 2 недель.
Противопоказания к применению ЭВ и ЭМ:
· массивная кровопотеря (более 40% ОЦК);
· гипокоагуляционные состояния;
· тромбоэмболии различного генеза;
· приобретенная гемолитическая анемия.
Методика применения эритроцитной взвеси и эритроцитной массы
Во-первых, проверяется герметичность флакона с ЭВ и ЭМ, правильность паспортных данных на этикетке. Производится макроскопический осмотр трансфузионной среды (т.е. повторяется индивидуальный контроль пригодности ее для переливания). Содержимое флакона не должно быть мутным, в нем не должно быть сгустков и нитей фибрина.
Во-вторых, определяется групповая принадлежность ЭМ, группа крови больного и производится проба на совместимость эритроцитов донора и сыворотки реципиента. Трансфузия проводится с использованием одноразовой системы. Перед началом переливания обязательно делается биологическая проба.
Трансфузия ЭМ может производиться как капельно, так и струйно. Если необходимо увеличить скорость вливания, то перед трансфузией можно добавить во флакон или мешок 30-50 мл изотонического раствора хлорида натрия.
2. Лейкоцитная масса
Лейкоцитная масса (ЛМ) представляет собой трансфузионную среду с большим содержанием лейкоцитов. Как примеси в ее состав входят эритроциты, тромбоциты и плазма.
Как уже говорилось ранее, проблема сохранения морфологической структуры и функциональных свойств лейкоцитов весьма актуальна. В силу того, что лейкоциты являются сложными ядросодержащими клетками, склонными к адгезии и необратимой агрегации, гибель их в процессе хранения происходит в течение нескольких дней. Такой короткий срок хранения лейкоцитов обусловлен, в первую очередь, истощением их энергетического потенциала. Исходя из этого становится ясным, почему для трансфузий применяют ЛМ либо свежезаготовленную, либо со сроком хранения не более 1 сут.
Методы получения лейкоцитной массы для трансфузий
ЛМ для трансфузий можно получить несколькими методами:
· путем снятия лейкоцитной пленки после центрифугирования цельной крови и удаления плазмы;
· путем фильтрационного лейкоцитафереза - фильтрацией гепаринизированной крови через нейлоновые фильтры с последующим отмыванием с них лейкоцитов;
· путем лейкоцитафереза с применением автоматических сепараторов непрерывного действия - в этом случае аппарат при помощи 2 игл подключают к венам донора на 3-4 ч. Кровь, забираемая у донора центрифугируется - лейкоциты эвакуируются в пластикатный мешок, а эритроциты и плазма возвращаются донору.
Хранение лейкоцитной массы
Если ЛМ не подвергается криоконсервации, то она должна быть перелита реципиенту в тот же день, в который была заготовлена. О причинах этого мы говорили выше. Если же необходимо сохранять ЛМ более длительное время, то для этого больше всего подходит замораживание при ультранизких температурах (-196°С). В отличие от эритроцитов лейкоциты не переносят быстрого охлаждения. Поэтому замораживание проводится по специальной программе, которая состоит в том, что снижение температуры происходит постепенно (по 3° С в 1 мин в течение всего цикла замораживания). Такой метод консервирования позволяет сохранить лейкоциты длительно - до нескольких лет.
По мере надобности контейнеры с ЛМ подвергаются размораживанию. Этот процесс происходит на водяной бане при температуре +39° С. Такая сравнительно высокая температура оттаивания позволяет избежать повреждения клеток из-за рекристаллизации (которая обычно имеет место при медленном нагревании контейнера).
Методика трансфузии лейкоцитной массы
Методика переливания ЛМ в сущности мало отличается от методик переливания других трансфузионных сред и, в частности, компонентов крови. Для переливания ЛМ используются стандартные одноразовые системы, снабженные капроновым фильтром.
Скорость трансфузии ЛМ составляет 30-40 капель в минуту.
Подбор ЛМ осуществляется по системам АВ0 и Rh. Также необходимо проводить определение совместимости лейкоцитов донора и реципиента по главному комплексу гистосовместимости (HLA).
Терапевтическая доза ЛМ составляет 1? 10 10 -4? 10 10 клеток. Для проявления эффекта терапевтическая доза ЛМ должна переливаться ежедневно не менее 3-4 дней подряд.
3. Тромбоцитная масса
Как известно, тромбоциты являются одним из ведущих компонентов системы гемостаза. Содержание их в крови здорового человека колеблется от 150? 10 9 до 400? 10 9 /л.
Критический уровень тромбоцитов, при котором могут возникать спонтанные кровотечения, составляет 30? 10 9 /л и менее. Занимая в сосудах краевое положение, тромбоциты выполняют ангиотрофическую функцию - они поддерживают нормальную структуру и функцию стенок сосудов. Тромбоциты создают известную преграду для прохождения эритроцитов через капиллярную стенку, при повреждении сосудистой стенки выделяют ряд свертывающих факторов крови (тромбопластин, серотонин, ретрактозим и др.), которые влияют на ретракцию кровяного сгустка и способствуют обеспечению надежного первичного гемостаза. Тромбоциты поддерживают спазм поврежденного сосуда путем секреции вазоактивных веществ (серотонин, адреналин, норадреналин и т.д.), которые сконцентрированы в специальных гранулах.
Методы получения ТМ для трансфузий
Для получения ТМ используются следующие методы:
· дифференцированное центрифугирование - выделение ТМ из цельной консервированной донорской крови;
· плазма-тромбоцитаферез - выделение ТМ из обогащенной плазмы:
· тромбоцитаферез с применением автоматических сепараторов.
Наиболее оптимальным методом безусловно является последний в силу того, что позволяет получить от одного донора до 10? 10 10 -60? 10 10 тромбоцитов.
Хранение ТМ
ТМ можно сохранять в двух температурных режимах. Это зависит от того, как быстро необходимо получить гемостатический эффект и как долго его нужно поддерживать. Так ТМ, сохраняемая при комнатной температуре, после трансфузии оказывает отсроченный гемостатический эффект, а ТМ, сохраняемая при +4°С, дает сравнительно быстрый гемостатический эффект. В первом случае значительно удлиняются сроки циркуляции тромбоцитов, а во втором случае сроки укорачиваются и приживаемость тромбоцитов уменьшается.
На основании этого в клинической практике нашла применение ТМ, хранившаяся не более 24 ч при комнатной температуре или при температуре +4°С.
Методика переливания ТМ
Для переливания используется одноразовая система с капроновым фильтром.
Перед трансфузией проводится проба на индивидуальную совместимость. Подбор ТМ для переливания - как обычно, по системам АВ0 и Rh.
ТМ переливается внутривенно капельным способом.
4. Плазма крови
После выхода крови из кровеносного русла она свертывается, образуя сгусток и жидкость светло-желтого цвета - сыворотку. Если же ее поместить во флакон с консервирующим раствором, то она не свертывается и при отстаивании на дно оседают форменные элементы, а над ними остается жидкая часть крови - плазма.
Плазма крови является внутренней жидкой средой организма, содержащей композицию различных по составу и свойствам биологически активных веществ (белковых, углеводных, липоидных и других соединений), что определяет важную роль плазмы в обеспечении жизнедеятельности человека (Гаврилов O.K., Русанов В.И., 1979).
Плазма имеет желтоватый цвет и по объему занимает почти половину всей массы крови. Соотношение форменных элементов и плазмы определяется показателем гематокрита. У здорового человека гематокрит равен 45. Таким образом, 45% всего объема (но 50% по массе) крови составляют форменные элементы, а остальная часть приходится на долю плазмы.
Плазма содержит около 90% воды, 7-8% белка, 1,1% органических веществ, не относящихся к белкам, и 0,9% неорганических соединений. Она осуществляет в организме множество функций: переносит по всем тканям форменные элементы, доставляет из пищеварительной системы углеводы, аминокислоты, продукты распада жиров, посредством плазмы токсические продукты выделяются через почки, в ней находятся антитела, осуществляющие защитную роль, плазма обеспечивает различные органы гормонами.
Плазма крови (Plasma sanguinis) представляет 7-8% коллоидный раствор смеси белков: альбумина, альфа-, бета- и гамма-глобулинов, фибриногена, а также их комплексов с липидами и углеводами (липо- и гликопротеидов), рН» 7. Плазма в значительной мере - универсальное лечебное средство. В клинической практике в основном применяют сухую плазму, реже - замороженную и нативную. Терапевтический эффект плазмы основан не только на дезинтоксикационном, но и статическом действии, на коррекции белковой недостаточности. Устранение белкового дефицита и соответственно повышение онкотического давления в крови способствуют устранению отеков, усилению диуреза. Вместе с тем следует подчеркнуть, что в связи с длительным периодом полураспада плазменных белков плазма не является источником парентерального питания.
Трансфузии плазмы назначают для замещения плазмопотери как дезинтоксикационное средство. Переливание плазмы показано при язвенной болезни желудка и двенадцатиперстной кишки, а также с гемостатической целью, с учетом того, что в плазме содержатся факторы свертывания.
Особенно показана трансфузия плазмы (до 1-2 л) при ожоговой болезни, так как наблюдается значительная плазмопотеря, которую необходимо восполнять.
В клинике плазму широко применяют при вирусных гепатитах, особенно при переходе процесса в хроническую форму, при затяжном течении кишечных инфекций разного происхождения, геморрагическом синдроме, септических состояниях, развитии инфекционных болезней у истощенных больных, а также в целях коррекции дефицита плазменных белков при гипопротеинемиях разного происхождения. В отделениях интенсивной терапии плазму применяют в целях дезинтоксикации при инфекционно-токсическом шоке, печеночной прекоме и коме (при отсутствии гиперазотемии!), отеке-набухании головного мозга, отеке легких.
Плазму выпускают во флаконах по 100, 200, 300 мл. Вводят внутривенно (основной метод), внутриартериально, в костный мозг, подкожно. В целях обеспечения дезинтоксикационного и стимулирующего действия показаны капельные внутривенные инфузии плазмы (50-100-200 мл) с интервалами 3-4-5 дней. При назначении плазмы с заместительной целью ее вводят струйно в достаточно больших объемах, обычно в сочетании с полиглюкином. При особенно выраженной гипопротеинемии назначают до 300-400 мл, инфузию повторяют каждые 2 дня. В целях достижения гемодинамического эффекта суммарная доза определяется состоянием больного: она должна обеспечивать устойчивое повышение АД выше критического уровня (90 мм рт. ст.). Больным с признаками отека-набухания головного мозга, отека легких в целях дегидратации показано введение концентрированной плазмы, т.е. сухой плазмы, разведенной в 2-4 раза меньших объемах жидкости.
Переливания плазмы, как правило, переносятся хорошо. При введении малых и средних доз нет необходимости в проверке групповой и резус-совместимости. При массивных переливаниях она обязательна, проводится также трехкратная биологическая проба. В целях предупреждения развития посттрансфузионного гепатита при заготовке плазмы обязательна проверка доноров на наличие в крови австралийского антигена (HB s Ag).
Переливания плазмы противопоказаны при выявлении у больных явлений гиперкоагуляции и повышенной сенсибилизации к парентеральному введению белка.
ЛИТЕРАТУРА
1. «Неотложная медицинская помощь», под ред. Дж. Э. Тинтиналли, Рл. Кроума, Э. Руиза, Перевод с английского д-ра мед. наук В.И.Кандрора, д. м. н. М.В.Неверовой, д-ра мед. наук А.В.Сучкова, к. м. н. А.В.Низового, Ю.Л.Амченкова; под ред. Д.м.н. В.Т. Ивашкина, Д.М.Н. П.Г. Брюсова; Москва «Медицина» 2001
2. Интенсивная терапия. Реанимация. Первая помощь: Учебное пособие / Под ред. В.Д. Малышева. -- М.: Медицина.-- 2000.-- 464 с.: ил.-- Учеб. лит. Для слушателей системы последипломного образования.-- ISBN 5-225-04560-Х
Подобные документы
Состав плазмы крови. Морфология форменных элементов крови: эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов. Понятие о лейкоцитарной формуле. Морфофункциональные особенности лимфы. Сравнение состояния хроматина в лимфоците и моноците. Гемоглобин и его соединения.
презентация , добавлен 22.05.2015
Показания к переливанию эритроцитной массы, ее получение. Современная заместительная терапия тромбоцитопенического геморрагического синдрома амегакариоцитарной этиологии. Переливание лейкоцитной массы. Трансфузии плазмы. Иммунные препараты крови.
реферат , добавлен 25.08.2013
Переливание крови и кровезаменителей на этапах медицинской эвакуации. Современные принципы организации службы крови в условиях войны. Источники заготовки крови, донорство. Транспортировка и хранение крови. Правила переливания крови и кровезаменителей.
курсовая работа , добавлен 26.10.2014
Кровь. Функции крови. Компоненты крови. Свертывание крови. Группы крови. Переливание крови. Болезни крови. Анемии. Полицитемия. Аномалии тромбоцитов. Лейкопения. Лейкоз. Аномалии плазмы.
реферат , добавлен 20.04.2006
История переливания крови. "Плюсы" и "минусы" гемотрансфузий. Действие перелитой крови на организм реципиента. Эритроцитарная, тромбоцитарная, лейкоцитарная массы, препараты крови. Характеристика гемотрансфузионных осложнений, их лечение, профилактика.
курсовая работа , добавлен 01.12.2014
Сравнительное исследование влияния низкомолекулярной фракции кордовой крови и фармакологического препарата актовегина на показатели фагоцитарной активности нейтрофилов трансфузионной лейкоцитарной массы и кислород-зависимых бактерицидных механизмов.
дипломная работа , добавлен 17.08.2011
Использование крови с лечебными целями. Первое переливание крови от человека человеку. Показания к переливанию крови, ее компонентов. Типология групп крови. Диагностика ВИЧ-инфекции. Сравнение количества переливаний крови в г. Находка и других городах.
курсовая работа , добавлен 26.10.2015
С древности люди видели кровь как источник жизненных сил и пытались использовать её для исцеления. Однако, до XVII в. переливание крови практически не производилось. Эксперименты по переливанию крови животных людям. Наложение запрета на переливание крови.
презентация , добавлен 23.11.2010
Общие функции крови: транспортная, гомеостатическая и регуляторная. Общее количество крови по отношению к массе тела у новорожденных и взрослых людей. Понятие гематокрита; физико-химические свойства крови. Белковые фракции плазмы крови и их значение.
презентация , добавлен 08.01.2014
Состав крови, ее элементы. Эритроциты человека - безъядерные клетки, состоящие из белково-липидной оболочки и стромы, заполненной гемоглобином. Виды гемолиза. Строение и функции лекоцитов и тромбоцитов. Сравнительная таблица форменных элементов крови.
В своей практике врачам нередко приходится назначать переливание крови в тяжелых случаях, когда не остается других эффективных способов быстро нормализовать состояние больного.
Цельную кровь переливают не всегда, поскольку, например, у раковых пациентов она может стимулировать метастазирование. Негативное свойство цельной крови заключается в большом разнообразии антигенных раздражителей, которые в ней содержатся.
После получения ее от донора и хранения в течение определенного времени часть клеток разрушается и теряет свои функциональные свойства, а кроме того, появление значительного количества таких «обломков» чревато большой нагрузкой на почки и иммунную систему реципиента.
По этой причине обычно используют отдельные фракции крови строго по показаниям. В них спектр возможных антигенов намного меньше, и они не содержат клеток и компонентов, в которых нет необходимости.
В Европейской клинике хирургии и онкологии нередко приходится прибегать к переливанию крови и ее компонентов, так как здесь проводится лечение пациентов с тяжелой раковой и соматической патологией.
Благодаря многолетнему опыту работы и высокому уровню подготовки врачей, количество осложнений от переливания крови и ее фракций сведено к минимуму.
Четкое следование предписанным протоколам и постоянный мониторинг состояния пациентов позволяет вовремя диагностировать и предотвращать любые негативные побочные эффекты проводимой терапии.
Получение эритромассы
Если целью лечения данного конкретного пациента является устранение анемии, то нет необходимости переливать цельную кровь, поскольку перечень осложнений для такой процедуры гораздо обширней, чем, например, при переливании эритромассы.
Существует много способов ее заготовки, но основной смысл заключается в отстаивании и центрифугировании крови, удалении плазмы и аппаратном фракционировании форменных элементов. При этом иногда эритроциты отмывают в растворе, что позволяет снизить антигенную нагрузку.
В ряде случаев их погружают в крио-протекторный раствор, который дает возможность осуществлять замораживание без разрушения клеток. Также готовят эритроцитарную взвесь, в которой помимо отмытых (от остатков плазмы и других форменных элементов) эритроцитов содержится физиологический раствор.
Такая взвесь не содержит антигенов, ассоциированных с лейкоцитами, тромбоцитами, и сывороточных белков. Отмытую эритроцитарную взвесь используют для тех больных, у которых в анамнезе были аллергические реакции при трансфузии крови и ее компонентов.
Показания к переливанию эритромассы
Общим показанием к переливанию эритроцитарной массы является падение гемоглобина ниже 70 г/л и гематокрита ниже 25%. Такая ситуация может быть при острых кровотечениях, когда человек потерял треть объема циркулирующей крови.
Хронические кровопотери также могут быть показанием для переливания крови. При заболеваниях желудочно-кишечного тракта происходит нарушение всасывания железа и витаминов, в частности В12 и фолиевой кислоты, что приводит к развитию анемии.
При онкологической патологии из-за синдрома интоксикации подавляется красный росток кроветворения, что приводит к развитию апластической анемии.
При лейкозах и лимфомах избыточное производство лейкоцитов приводит к инфильтрации костного мозга раковыми клетками, в результате чего активность кроветворной системы, не имеющей отношение к производству пула мутировавших клеток, сильно снижается и развивается анемия.
Различные болезни пищеварительной системы, которые сопровождаются образованием эрозий и язв, часто приводят к хронической кровоточивости и возникновению выраженной анемии, которая нуждается в соответствующей терапии.
У женщин патология репродуктивной системы нередко провоцирует анемию: это могут быть не только новообразования, но и предраковые состояния, а также полипы полости и шейки матки, которые в результате механической травматизации кровоточат, приводя к потере гемоглобина.
Противопоказания к переливанию крови
Противопоказания к переливанию крови при тяжелых кровопотерях и анемиях носят относительный характер и не могут быть препятствием для этой процедуры.
В случае выраженной сердечной недостаточности введение в кровеносное русло избыточного объема жидкости может вызвать дополнительную нагрузку на сердечную мышцу и тогда приходится вводить пациенту мочегонные и вазодилататоры.
Следует также проявлять осторожность при выраженной почечной недостаточности.
Эритромасса содержит некоторое количество разрушенных клеток и свободного гемоглобина, которые могут засорять почечные канальцы и усиливать дисфункцию.
Кроме того, возможно разрушение части эритроцитов из-за возможного присутствия антиэритроцитарных антител и развитие гемолиза.
Процедуры переливания стараются избегать при острых инсультах, печеночной недостаточности, эндокардите, который сопровождается уменьшением сердечного выброса.
Процедура переливания эритромассы
Эритроциты необходимо человеку, поскольку основная их функция - это перенос кислорода в молекулах гемоглобина. При их снижении организм испытывает кислородное голодание, что проявляется в общей слабости, бледности, снижении умственной и физической выносливости.
Критическая потеря крови с форменными элементами приводит к гиповолемическому шоку и смерти. По этой причине необходимо замещать как утраченный объем, так и клетки крови для быстрого улучшения состояния пациента.
Перед переливанием донорский материал тестируют на антигены системы AB0, резус-фактор и Келл-антигены. Это позволяет минимизировать риски иммунного конфликта между кровью донора и реципиента.
Кроме того, после того, как эритромасса доставлена в отделение проводят пробу на совместимость. Для этого берут две капли сыворотки крови пациента в пробирке, добавляют одну каплю эритромассы и две капли полиглюкина - все тщательно перемешивают.
Затем доливают 3 мл физиологического раствора. Если материал пациента и донорских эритроцитов не совместимы, то образуются мелкие агглютинаты, которые выглядят, как мелкий красный песок в растворе и на стенках пробирки.
В этом случае переливать такой материал нельзя и подыскивают другую эритромассу. Если испытание на совместимость пройдено благополучно, то проводят биологическую пробу.
Для этого в вену пациента вводят 10 мл эритромассы и выжидают 3-5 минут: при отсутствии неблагоприятных симптомов, испытание повторяют еще два раза. Если пациент хорошо отреагировал на биологическую пробу, то вводят основной объем эритромассы.
Вводимый раствор предварительно прогревают до 38ºС. Соблюдение всех необходимых правил позволяет максимально сократить риски осложнений.
Эритроцитная масса (ЭМ) - основной компонент крови, который по своему составу, функциональным свойствам и лечебной эффективности при анемических состояниях превосходит переливание цельной крови.
Ее сочетание с плазмозаменителями и свежезамороженной плазмой более эффективно, чем применение цельной крови, поскольку в ЭМ снижено по сравнению с цельной кровью содержание цитрата, аммиака, внеклеточного калия, а также микроагрегатов из разрушенных клеток и денатурированных белков плазмы.
Эритроцитную массу получают из консервированной крови путем отделения плазмы.
Трансфузии эритроцитной массы показаны для применения с заместительной целью при анемических состояниях различного генеза:
Острые постгеморрагические анемии (травмы, сопровождающиеся кровопотерей, желудочно-кишечные кровотечения, кровопотери при хирургических операциях, в родах и т.д.);
Тяжелые формы железодефицитных анемий, особенно у пожилых лиц, при наличии выраженных изменений гемодинамики;
Анемии, сопровождающие хронические заболевания желудочно-кишечного тракта и других органов и систем, интоксикации при отравлениях, ожогах, гнойной инфекции и др.;
Анемии, сопровождающие депрессию эритропоэза (острые и хронические лейкозы, апластический синдром, миеломная болезнь и др.).
В лечебной практике может применяться эритроцитная масса нескольких видов, в зависимости от метода заготовки и показаний к гемотерапии:
Побочные эффекты при применении эритроцитной массы
Гемолитические посттрансфузионные реакции;
Негемолитические посттрансфузионные реакции (в основном озноб, лихорадка, крапивница);
Аллоиммунизация против НLA и эритроцитарных антигенов;
Может быть перенесен сифилис, если эритроциты хранились менее 96 часов при 4 0 С;
Возможен перенос вирусов (гепатитов, ВИЧ и т.д.) вопреки тщательному контролю донорской крови;
Редко, но возможен перенос рrotozoa (напр. малярии);
Септический шок из-за бактериального загрязнения;
Биохимический дисбаланс при массивном переливании, например, гиперкалиемия;
Посттрансфузионная пурпура.
эритроцитная масса (нативная) с гематокритом 0,65-0,75;
Получение:
Эритроцитная масса получается из цельной крови после отделения плазмы путем отстаивания или центрифугирования. Она отличается от донорской крови меньшим объемом плазмы и высокой концентрацией эритроцитов.
Состав: 80%-эритроциты
20%-плазма
Хранение: Срок хранения 21 день при температуре +4-+6 °С
эритроцитная взвесь - эритроцитная масса в ресуспендирующем, консервирующем растворе (соотношение эритроцитов и раствора определяет ее гематокрит, а состав раствора - длительность хранения);
Получение: эритроциты выделяют из полной дозы крови центрифугированием и удалением плазмы с последующим добавлением к ним консервирующего раствора в объеме 80–100 мл, обеспечивающего энергетический метаболизм в эритроцитах и, следовательно, более длительный срок хранения.
Состав:
Лейкоциты (около 2,5-3,0х10 9 клеток);
Тромбоциты(колличество зависит от способа центрифугирования)
Хранение: В зависимости от состава гемоконсерванта и ресуспендирующего раствора эритроцитная масса может храниться до 42 дней.
эритроцитная масса, обедненная лейкоцитами и тромбоцитами;
Получение: из дозы крови после центрифугирования путем удаления плазмы и 40-60 мл лейкотромбоцитарного слоя в условиях замкнутой системы полимерных контейнеров. Плазму возвращают в контейнер с эритроцитами.Содержание лейкоцитов должно быть в дозе, тромбоцитов.
Состав: - все эритроциты из исходной дозы крови;
лейкоциты- менее 1,2х10 9 клеток, тромбоциты-– менее 10х10 9
Хранение: Не более 24 часов при температуре от +2 до +6 0 С, если при приготовлении использовалось фильтрование. При применении открытых систем для ее получения она должна использоваться немедленно.
«+»Посттрансфузионные реакции негемолитического типа встречаются гораздо реже, чем при переливании обычной эритроцитной массы
эритроцитная масса размороженная и отмытая(отмытые эритроциты (ОЭ))
Получение: Отмытые эритроциты (ОЭ) получают из цельной крови (после удаления плазмы), ЭМ или замороженных эритроцитов путем их отмывания в изотоническом растворе хлорида натрия или в специальных отмывающих средах
Состав: отмытые эритроциты(в процессе отмывания удаляются белки плазмы, лейкоциты, тромбоциты,)
Хранение: Срок хранения ОЭ при температуре +4 0 ±2 0 С – не более 24 часов с момента их заготовки.
криоконсервированная эритроцитарная масса.
Получение и применение компонента
Используются эритроциты, замороженные в первые 7 дней с момента заготовки крови с применением криопротектора и хранящиеся при температуре ниже
минус 80 0 С. Перед переливанием клетки размораживают, отмывают и заливают ресуспендирующим раствором.
Состав: Восстановленная доза криоконсервированных эритроцитов практически не содержит плазменных белков, гранулоцитов и тромбоцитов.
